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University of Moncton, Moncton, NB, Canadaらのグループは、バチルス菌とシュードモナス菌の相互作用が植物の生長を促すと報告しています。
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC8488376/

本研究においては、カナダの土壌から単離されたバチルス菌とシュードモナス菌を使用し、単体を接種した場合、両方を接種した場合で、大麻草の成長に与える影響を調査しています。基本になる土壌には、市販品の土壌である（Promix と Canna coco）が使用されています。

単一菌の接種では、本実験の条件下では、植物の成長促進効果は見られませんでしたが、両方で処理した場合（バチルス菌とシュードモナス菌）には、顕著な植物成長促進効果が見られました。元になる土壌の違いで、効果には若干のバラつきが出ます。

ここで、223と825は、シュードモナス菌、979、1082、279は、バチルス菌。 PromixとCanna cocoは、市販の異なった土壌。

どうして、このような植物成長促進効果が得られるのか？という点が大きな課題なのですが、土壌細菌の代謝経路に違いが見られたことは注目に値します。特に、下記の５種の代謝経路が昂進していました。

• oxidative glucose degradation
• creatinine degradation I
• L-lysine biosynthesis II
• S-methyl-5-thio-α-D-ribose 1-phosphate degradation I
• L-methionine salvage cycle III)

これら５種の代謝経路が植物成長促進の背後にあるかも知れず、これらは、バチルス菌やシュードモナス菌の代謝経路にリンクしていることは確かです。

この研究の中で同定されたリン脂質代謝経路 は、植物における重要な二次情報伝達物質経路として知られており、植物ホルモンや土壌細菌の誘発に関係しています。バクテリアから分泌されるリン脂質代謝酵素によって、リンが植物が吸収されやすい形に可溶化され植物の生長に寄与するとされています。シュードモナス菌におけるリン脂質代謝や糖代謝が土壌中の栄養素を吸収しやすい形に変えることで植物の成長が促進されるのでしょう。

Georg-August-University Göttingen, Wilhelmsplatz 1, 37073 Göttingen, Germanyらのグループは、合胞体形成（細胞融合）がSARS-CoV-2 デルタ変異株の感染拡大に寄与しているに違いないと述べています。
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC8487035/

Vero、293T、Caco-2、Calu-3、これらの細胞株はACE2を発現しており、Vero、Caco-2、Calu-3細胞は、しばしばSARS-CoV-2の感染実験に使用されています。デルタ株のSpikeタンパク質は、293TとVero細胞に対しては、WTとほぼ同じ効率で感染しましたが、Caco-2とCalu-3細胞に対しては1.5倍から2.0倍感染効率が上昇していました。しかしながら、デルタ株のSpikeタンパク質とACE2との結合力については、差異は観測されず、Caco-2とCalu-3細胞への感染効率が上昇したのは、一般的に言われているようなACE2へのデルタ株のSpikeタンパク質の結合力が上がったから、というのが原因ではないようです。

SARS-CoV-2 Spikeタンパク質に起因する合胞体の形成がデルタ株の感染力のアップに寄与しているのではという考えがあります。この点を検証するために、ヒトの肺細胞株でACE2を良く発現しているA549細胞を用いて合胞体形成の確認実験が行われました。期待されたように、WTのSpikeタンパク質は合胞体の形成を促しました。驚くべきことに、デルタ株のSpikeタンパク質の合胞体形成はより多く起こっており、WTに比べて合胞体の形成量は2.5倍以上にもなっていました。

このような事から、合胞体（細胞融合）の形成が促進されることが、デルタ株の感染拡大に関係していると結論されました。

Department of Immunobiology, Yale University School of Medicine, New Haven, CT, USAらのグループは、SARS-CoV-2のウイルス増殖がマクロファージで起こり、炎症カスケードを引き起こしていると述べています。
https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2021.09.27.461948v1

SARS-CoV-2 が感染している細胞を特定する為、著者らは、MISTRG6-hACE2 マウス（ヒト化-ACE2発現マウス）を使用しました。期待されるように、SARS-CoV-2のウイルスRNAはSARS-CoV-2感染の主要なターゲットである肺上皮細胞から検出されました。しかし驚くべきことに、免疫細胞も同じレベルのSARS-CoV-2ウイルスRNAを持っていました。これらの感染された細胞を可視化し特徴付けるために、MISTRG6-hACE2マウスをレポーターを発現させたウイルス株 SARS-CoV-2-mNG19で感染させました。気管支肺胞洗浄液（BAL）中の大多数の上皮細胞（EPCAM+）は、トータルの肺上皮細胞から見たら少ないのですが、SARS-CoV-2に感染していました。免疫細胞からはクリヤにmNG信号が観測され、そのmNG+ 免役細胞は、主にマクロファージでした。

マクロファージは貪食細胞なので、SARS-CoV-2のウイルスRNAがマクロファージの中で複製したものなのか？それとも感染細胞や残骸の貪食で単に獲得されたものであるのかを判断する必要があります。これを行う為に、まず初めに、ACE2がトランスフェクトされていないMISTRG6マウスのマクロファージのmNG信号が評価されました。このマウスにおいては、上皮細胞はSARS-CoV-2に感染していませんでした。しかしながら、マクロファージには同レベルのmNG信号が観測され、マクロファージによるウイルスの捕獲は、感染された上皮細胞とは独立であることを伺わせます。マクロファージにおけるSARS-CoV-2の複製を決定付ける為に、ウイルス複製の特徴となるウイルス複製産物であるsubgenomic RNAやdouble stranded RNA (dsRNA)、そしてまた複製に関わる酵素であるRNA dependent RNA polymerase (RdRp) らが評価されました。
(1) mNG+ 対 mNG-上皮細胞におけるgenomic 及び subgenomic ウイルスRNAの定量を4日後或いはまた14日後に行った結果では、mNG+上皮細胞とmNG+免疫細胞のみが検出可能なsubgenomicウイルスRNAを示しました。免疫細胞と上皮細胞におけるそのsubgenomic RNAのレベルは同程度であり、両方の細胞で同程度のウイルス複製が起こっていることを示唆していました。
(2) mNG+ 細胞内のdsRNA（ウイルス複製の証）を染色し、mNG信号とdsRNAが同じ場所に局在しているか？を確認したところ、上皮細胞、免疫細胞の両方において同位置に局在していました。
(3) マクロファージの中にRdRpが確認されました。

加えて、マクロファージによる抗体依存性感染増強の存在可能性についてですが、SARS-CoV-2に対するmAbを感染したマウスに与え、35日後に感染度合いをmNG信号で評価しています。肺におけるmNG+のマクロファージが顕著に増加していることが確認されました。